抗體稀釋液

    其實許多實驗室抗體稀釋液就用一般PBS即可，但的抗體稀釋液中除PBS成份外，還加了*防腐劑、BSA穩定劑等組份，對抗體的多次回收利用較好。正因為這種原因，我一直用國產的抗體稀釋液，一段時間在更換新抗體稀釋液時實驗結果出現了陰性結果（提示可能一抗沒有結合），zui后從抗體濃度和孵育時間、封閉時間等原因排除后，發現是新抗體稀釋液的PH值偏酸，而使抗原抗體反應不佳，終而出現假陰性結果。

切片清洗（浸洗、沖洗和漂洗）

    為了防止一抗、二抗等試劑殘留而引起非特異性染色，所以適當地加強清洗（延長時間和增多次數）尤為重要，我一般在一抗孵育前的清洗是3min*3次，而一抗孵育后的清洗均為5次*5min。
注意：

①單獨沖洗，防止交叉反應造成污染。

②溫柔沖洗，防止切片的脫落。我喜歡用浸洗方式；

③沖洗的時間要足夠，才能*洗去結合的物質。

④PBS的PH和離子強度的使用和要求。這方面我有慘痛教訓，當時我買的抗體稀釋液偏酸，結果背景一片黃（未見特異性染色），建議PH在7.4-7.6濃度是0.01M。（中性及弱堿性條件（PH7-8）有利于免疫復合物的形成，而酸性條件則有利于分解；低離子強度有利于免疫復合物的形成，而高離子強度則有利于分解）

DAB顯色

    背景的深淺和特異性染色的深淺均可以由DAB孵育條件決定。DAB顯色時間不是固定的，主要由顯微鏡下控制顯色時間，到出現特異性染色較強而本底著色較淺時即可沖洗；DAB顯色時間很短（如幾秒或幾十秒）就出現很深的棕褐色，這很可能說明你的抗體濃度過高或抗體孵育時間過長，需要下調抗體濃度或縮短你的抗體孵育時間；此外，若很短時間就出現背景很深，還有可能你前面的封閉非特異性蛋白不全，需要延長封閉時間；DAB顯色時間很長（如超過十幾分鐘）才出現陽性染色，一方面可能說明你的抗體濃度過低或孵育時間過短（一抗4℃）；另一方面就是封閉時間過長。